Created by the

Jaguar (Panthera onca) Care Manual
 
52 
Association of Zoos and Aquariums
 
 
7.5 Capture, Restraint, and Immobilization 
The need for capturing, restraining and/or immobilizing an 
animal for normal or emergency husbandry procedures may be 
required. All capture equipment must be in good working order 
and available to authorized and trained animal care staff at all 
times (AZA Accreditation Standard 2.3.1).  
The  AZA  Jaguar SSP recommends that member institutions 
develop and implement protocols to train staff members for safe capture and restraint of jaguars. Capture 
and restraint may be performed through a combination of training and chemical immobilization.  Training 
jaguars to voluntarily enter into a squeeze cage can minimize the need for using blow pipes or dart guns 
to chemically immobilize the animal. 
 
Chemical immobilization is necessary when performing more invasive veterinary procedures on a 
jaguar. Jaguars should be fasted for at least 24 hours prior to anesthesia and water should be withheld 
for at least 12 hours prior to anesthesia. Similar to other felids, anesthesia of jaguars is usually uneventful 
if proper drugs and techniques are used. However, the clinician should always be prepared for handling 
emergency situations (Kreeger & Arnemo, 2012; West et al., 2007) as these can and do arise. There are 
a number of anesthetic protocols that have been successfully used for free-ranging and managed 
jaguars. A review of these protocols can be found in Deem & Karesh (2005) and West et al. (2007).  
Clinicians should be familiar with the drugs they choose to use and understand the risk and benefits 
associated with different anesthetic options. Telazol
®
  can be used  (4–8 mg/kg  i.m.). A supplemental 
anesthesia  can be ketamine at a dose of 1–1.5 mg/kg i.v. or 1–2 mg/kg i.m., as needed to maintain an 
adequate level of anesthesia.  Although there has been debate as to whether Telazol
®
  is a problem for 
tigers (Armstrong, 1990), there are no reports of adverse reactions to Telazol
®
  in jaguars  (Kreeger and 
Armstrong, 2010). Regardless, adverse reactions with any anesthetic protocols should be reported to the 
AZA Jaguar SSP veterinary advisor if they do occur.  
Ketamine (4 mg/kg) and xylazine (2 mg/kg) i.m.  have also been used in conjunction.  Supplemental 
anesthesia should be ketamine at a dose of 1–1.5 mg/kg i.v. or 1–2 mg/kg i.m., as needed to maintain an 
adequate level of anesthesia.  Yohimbine (0.125 mg/kg) should be delivered following anesthesia to 
reverse the effects of the xylazine.  
Ketamine (2.5–4 mg/kg) and Medetomidine (50–70 mg/kg)  i.m.  is another combination that can be 
utilized. A supplemental anesthesia should be ketamine at a dose of 1–1.5 mg/kg i.v. or 1–2 mg/kg i.m., 
as needed to maintain an adequate level of anesthesia. Atipamezole (5 x medetomidine dose) i.m. should 
be delivered following anesthesia to reverse the effects of the medetomidine.  
For any of these protocols, atropine (0.04  mg/kg) or glycopyrrolate (0.01–0.02 mg/kg) can be 
administered as a single dose either subcutaneously or intramuscularly if the cat has excessive salivation.  
Anesthesia is best maintained under zoo management (and increasingly so in the wild if longer term 
anesthesia is necessary) by providing isoflurane or sevoflurane via endotracheal tube.  Maintenance 
levels usually are 0.5–3% but may need to be adjusted based on careful monitoring of the plane  of 
anesthesia. 
 
7.6 Management of Diseases, Disorders, Injuries and/or Isolation 
AZA-accredited institutions should have  an extensive veterinary program that manages animal 
diseases, disorders, or injuries and has the ability to isolate these animals in a hospital setting for 
treatment if necessary.  The owner of an animal on loan at a 
facility is to be consulted prior to any elective invasive 
procedures, including permanent contraception. 
Jaguar  care staff should be trained in meeting the animal’s 
dietary, husbandry, and enrichment needs, as well as in restraint 
techniques. Staff should also be trained to assess animal welfare 
and recognize behavioral indicators animals may display if their 
health becomes compromised, however, animal care staff should 
not diagnose illnesses nor prescribe treatment (AZA Accreditation 
Standard  2.1.3). Protocols should be established for reporting 
these observations to the veterinary department. Hospital facilities 
for  jaguars  must  have  radiographic  equipment or access to 
AZA Accreditation Standard 
 
(2.3.1) Capture equipment must be in 
good working order and available to 
authorized, trained personnel at all times. 
AZA Accreditation Standard 
 
(2.1.3) Paid and unpaid animal care staff 
should be trained to assess welfare and 
recognize abnormal behavior and clinical 
signs of illness and have knowledge of 
the diets, husbandry (including 
enrichment items and strategies), and 
restraint procedures required for the 
animals under their care.  However, 
animal care staff (paid and unpaid) must 
not diagnose illnesses nor prescribe 
treatment. 

---

Jaguar (Panthera onca) Care Manual
 
53 
Association of Zoos and Aquariums
 
 
radiographic services (AZA Accreditation Standard 2.3.2), contain 
appropriate equipment and supplies on hand for treatment of 
diseases, disorders or injuries, and have staff available that are 
trained to address health issues, manage short and long term 
medical treatments and control for zoonotic disease transmission. 
Non-domestic felids may hide signs of illness until a disease 
is advanced. In  managed  settings, it is important that animal care staff be astute to subtle changes in 
behavior or physiologic signs that may suggest illness. Keepers that have daily contact with jaguars are 
often the best persons for noting these subtle changes. Any change in appetite, urination, defecation, or 
general behavior should be documented.  For example, changes in urine and fecal color, quantity,  and 
consistency should be noted. Dehydration can be assessed by a visual examination that shows a jaguar 
with dry mucous membranes and a dry hair coat.  Other visual observations that can be obtained from 
outside the enclosure include evaluation for normal breathing patterns and rate (normal breathing rate is 
8–24 bpm).  Other physiologic parameters  like  temperature (normal temperature is 37–39.50  °C  [98.6–
103.10 °F]) and pulse (normal pulse is 70–140 bpm) require handling the animal. Jaguar keepers noticing 
signs of illness should follow the protocol set forth by their institution for proper reporting of health 
concerns. 
 
Non-infectious diseases:  There are a number of diseases documented in the literature that occur in 
managed jaguars. A retrospective study on the morbidity and mortality of jaguars in AZA zoos from 1982–
2002 (Hope & Deem, 2006) provides a good review of these diseases. Non-infectious diseases include a 
high incidence of neoplasia which may be species related but also associated with husbandry under zoo 
management and/or longevity. Dental issues including calculi and tooth fractures are also commonly seen 
in managed jaguars. Laceration, with or without subsequent abscess formation, can also be a problem in 
managed jaguars.  Kidney and musculoskeletal diseases occur in jaguars, as in other large cat species, 
especially as they age. 
 
Jaguars appear to be uniquely predisposed to develop gynecological cancers. A high prevalence of 
ovarian, endometrial, and mammary gland cancers have been identified in managed jaguars through the 
AZA Contraceptive Advisory Group Contraceptive Health Surveillance program. Although other felids also 
develop mammary gland cancer and endometrial cancer, the risk is considerably higher in jaguars. Also, 
jaguars are the only felid to date to have documented ovarian cancer, and it affects more than 50% of the 
aged population. This combination of ovarian, uterine, and mammary cancers is linked to a genetic 
mutation in humans, which is of concern for the  AZA  Jaguar SSP. Therefore, a study supported by the 
SSP is being conducted to better understand the role that BRCA gene mutations may have in the high 
prevalence of reproductive tract related neoplasias in jaguars. For these studies, the SSP requests frozen 
tissues from both affected and unaffected jaguars and complete (intact) formalin-fixed reproductive 
tracts from all jaguars that are ovariohysterectomized (spayed) or that die (see appendices for forms). 
Frozen tissues for genetic analyses should include small samples of any tumor, the heart, the spleen, 
and skeletal muscle. 
 
Infectious diseases: Many infectious agents have been documented to cause morbidity and/or mortality 
in jaguars including protozoan (Cirillo et  al., 1990), bacterial (Abdulla et  al., 1982) and viral pathogens 
(i.e., canine distemper virus, feline infectious peritonitis) (Appel et  al., 1994; Fransen, 1973).  It is also 
assumed that jaguars are susceptible to the common respiratory disease agents of domestic and non-
domestic cats.  Additionally, there is serologic evidence of infection with canine distemper and feline 
immunodeficiency virus (Appel et  al., 1994;  Barr  et  al., 1989; Brown et  al., 1993; Deem, 2001).  Since 
there is insufficient data on the epidemiology and pathogenicity of FIV in jaguars, it is important to test all 
managed  jaguars for FIV-specific antibodies, and,  if possible,  all 
sero-positive animals should be housed separately from 
uninfected animals. 
AZA-accredited institutions must have a clear process for 
identifying  and addressing jaguar  animal welfare concerns within 
the institution (AZA  Accreditation Standard 1.5.8) and should 
have an established Institutional Animal Welfare Committee. This 
process should identify the protocols needed for animal care staff 
members  to communicate animal welfare questions or concerns 
AZA Accreditation Standard 
 
(2.3.2) Institution facilities must have 
radiographic equipment or have access to 
radiographic services. 
AZA Accreditation Standard 
 
(1.5.8) The institution must develop and 
implement a clear and transparent 
process for identifying, communicating, 
and addressing animal welfare concerns 
from paid or unpaid staff within the 
institution in a timely manner, and without 
retribution. 

---