Microsoft Word plankton kit Lesson plans Aug 2011 for web

44 

 

d)

 

Tow the net for 20–30 minutes.  

e)

 

If any sample is stuck in the net, use the squeeze bottle filled with seawater to flush the sample into the 

cod end jar.  Unscrew the cod end jar from the net and look at your sample.  Pour the sample into the 

plastic bottle for transport back to the classroom.   If any sample remains in the cod end jar, use the 

squeeze bottle. 

f)

 

Thoroughly rinse the plankton net, attached line, and cod end jar with fresh water as soon as possible 

after collecting the sample.  Reattach the cod end to the plankton net and allow the net to dry 

completely before storing.  If necessary, gently scrub the net with baking soda, then rinse and dry 

thoroughly. 

g)

 

Note:  It is extremely important to minimize the time from sample collection to analysis.  If the sample 

must be stored overnight, be aware that a large portion of the zooplankton will not survive.  However, 

there will still be plenty of organisms to observe so, if collecting the sample the day before is the only 

option, it will still be worthwhile.  To increase the lifespan of the zooplankton, dilute the sample by 

adding it to a bucket of seawater (you will need to re‐concentrate the sample prior to analysis, which 

can be done by pouring the water through the sieve).  Alternatively, you can prolong the life of the 

zooplankton by storing the sample in the refrigerator overnight.  Make sure the cap is loosened to allow 

air flow to the sample. 

 

4.

 

Familiarize yourself with the dissecting microscope. 

a)

 

  Parts of the microscope 

 

 

 

 

 

 

 

                        

                                

 

 

 

                       

 

 

Eyecup 

Diopter 

Focusing 

Ring 

 Interpupillary Adjustment  

Zoom Knob 

Upper Lamp 

Focusing Knob 

Base with Lamp  

Stage Plate 

Thumb Screw 

Stage Clip 

Main Power 

Switch 

Stage Plate 

Lamp Dimmer for 

Incident Light 

 

Stereo Head 

Camera 

Cable 

Camera 

Housing 

Vertical Pole 

Lock Screw for 

Focusing Carrier 

Lock Screw for 

Support Collar  

Prism Bar (On back)   



 

In = Both eyes, no camera 



 

Out = Left eye and camera 

Lamp Power 

Switches 

Incident Light Switch 

(from above) 

Transmitted Light 

Switch (from below) 

OFF 

ON

OFF 

ON 

Eyepiece 

---

45 

 

 

b)

 

Overview of the dissecting microscope 

i.

 

The microscope eyepieces have 10X magnification.  Coupled with 1.0X to 4.0X zoom lenses, the 

microscope offers a total magnification of 10X to 40X. 

ii.

 

The microscope has a main power switch as well as a power switch for the incident (upper) and 

transmitted (lower) light source. The intensity of the incident lamp can be adjusted with the lamp 

dimmer on the right side of the base.  

iii.

 

There is a built‐in camera with a USB cable that connects to the computer included with the kit.  

You can also use the Motic Images Plus software to capture, annotate, and store images in .jpg, 

.bmp, .sfc, or .tiff graphical format.  To share the display with your entire class, connect the 

computer to a projector or video monitor. 

5.

 

Set up the microscope and computer   

a)

 

Carefully remove the microscope from the action packer (see guide in microscope box for instructions). 

b)

 

Plug in one end of the power cord into the back of the microscope and the other end into a power 

outlet. 

c)

 

Plug one end of the USB cable into the back of the microscope and the other into a USB port on the 

computer provided.  Note: If you prefer to use your own computer, install the software prior to 

connecting USB cable.  

d)

 

Connect the computer to a projector. 

 

6.

 

Focus the microscope 

a)

 

Plug in the microscope, turn on the main power switch, and turn on the incident light.  

b)

 

Place a piece of paper with writing on it flat on the stage plate. 

c)

 

Look through the eyepieces and adjust the distance between your eyepieces by rotating the bases of the 

eyepieces (shown above as “Interpupillary Adjustment”) so that you see only one circle of light 

comfortably.  Note: If you can only see through the left eyepiece, carefully slide the prism bar in.  

d)

 

Carefully turn the zoom knob to the highest magnification. 

e)

 

Adjust the focusing knob until your specimen is clear and sharp.  

f)

 

The height of the microscope is set for plankton viewing.  If you try to view different items or if you 

cannot focus clearly, you may need to adjust the height of the microscope along the vertical post.  

i.

 

Turn main power OFF. 

ii.

 

Loosen the lock screw on the black support collar and lower the collar to the base.  

iii.

 

While holding the head of the microscope, carefully loosen the lock screw on the focusing 

carrier and adjust the height of the microscope. 

iv.

 

Tighten the lock screw on the focusing carrier. 

v.

 

Slide the support collar up to the base of the focusing carrier and tighten the lock screw. 

g)

 

Zoom in to the highest magnification and focus until the image is clear and sharp. 

h)

 

Zoom out to the lowest magnification.  Adjust the diopter focusing ring on the right eyepiece until the 

image in the right eyepiece is clear and sharp. 

i)

 

Repeat steps g and h for the left eyepiece.  

j)

 

Check the focus for the entire zoom range.  The microscope should now be parfocal, maintaining focus 

for the whole zoom range.  

 

7.

 

Viewing plankton sample 

a)

 

Use a plastic dropper to put a small amount of sample in a Petri dish.   

b)

 

Place the Petri dish on the stage plate of the microscope and look through the eyepieces.   

NEVER place a sample directly on the stage plate. 

c)

 

Turn on the transmitted light. 

d)

 

Zoom out to the lowest magnification and focus on the sample 

e)

 

Now you can move the Petri dish and zoom to specimens of interest.  Use the dissecting needles to 

move the plankton around for easier viewing. 

---