155
11. Singh B.K., Jenner C.F. Culture of detached ears of wheat in liquid culture: modification and
extension of the method. Aust. J. Plant Physiol. 1983. Vol. 10. P. 227 -236.
Т.Г.Карагезов, М.Г.Мамедова, С.Ш.Асадова
МЕТОД ИЗОЛИРОВАННЫХ КОЛОСЬЕВ
ПШЕНИЦЫ IN VITRO
НАНА Институт Ботаники
Показана возможность культивирования изолированных колосьев пшеницы в условиях
in vitro. Согласно первичным данным наилучшие результаты получены при изолировании
колосьев на стадии образовавшегося узла флагового листа. Наличие у колосьев флагового
листа продлевает время начальных стадий культивирования.
Ключевые слова: изолированный колос, флаговый лист, среды Мурасиге -Скуга,
Донована и Ли, in vitro, генотип
T.Q.Karagezov, M.Q.Mamedova, S.Sh.Asadova
METOD OF ISOLATED EARS OF THE WHEAT IN VITRO
ANAS Institute of Botany
There is demonstrated the possibility of cultivation of isolated wheat ears under in vitro
condition.
According to initial data the best results are obtained by isolating the ears on stage
of the formed node of flag leaf. The presence of flag leaf in ears prolongs the time of initial
stages of cultivation.
Key words: isolated ear , flaq leaf, Murashige - Skoog and Donovan - Lee medium, in
vitro, genotype
УДК 547.963.3:581.5
ИЗУЧЕНИЕ ИНТЕНСИВНОСТИ СИНТЕЗА РНК И ДНК
У РАСТЕНИЙ ПРИ СТИМУЛЯЦИИ И ИНГИБИРОВАНИИ РОСТОВЫХ
ПРОЦЕССОВ, ВЫЗЫВАЕМЫХ ДЕЙСТВИЕМ ГИДРОЗИД МАЛЕИНОВОЙ
КИСЛОТЫ
А.Д.МАМЕДОВА
Кандидат биологических наук
Институт Генетических Ресурсов НАНА, пр.Азадлыг 155,
Баку, Азербайджан
Стимуляторы и ингибиторы роста (физиологически активные вещества) оказывают
влияние на синтез химических компонентов клетки, деление и дифференцировку клеток,
морфогенез и т.д. и могут быть причиной многочисленных структурных и
функциональных изменений, которые изначально направлены на то, чтобы организм
выжил. Среди этих изменений существенную роль играет реакция генетического
156
аппарата, от которого во многом зависит, какие, в конечном итоге, белки, с какой
интенсивностью и последовательностью будут синтезированы клеткой в создавшейся
ситуации. Изучение ответных реакций растений на изменение фактора окружающеи
среды позволяет полнее и точнее определить содержание признака устойчивости к
неблагоприятным условиям среды [4].
Литературные данные [3] и наши исследования свидетельствуют о том, что
воздействие 0,001% концентрации гидрозид малеиновой кислоты (ГМК) на рост и
развитие растений оказывает стимулирующее действие, активируя жизнедеятельность
организма, концентрации 0,05М – ингибирующий эффект.
Учитывая вышесказанное, целью наших исследований явилось изучение
изменений биосинтеза нуклеиновых кислот, структурного состояния ДНК в соматической
клетке проростков пшеницы (Н-2) и ржи после 24 и 48 часового воздействия ГМК,
указанных концентраций.
Для определения содержания РНК и фракционного состава ДНК использовали
методы, описанные в работе В.Г.Конарева и С.Л.Тютерева [2]. Полученные в
относительных показателях (мг%) данные пересчитывали на 1 клетку (пг). Число клеток в
пробах дисков определяли по модифицированному методу Брауна [1].
В результате исследований было установлено, что у опытных вариантов отмечается
активация синтеза РНК при стимулирующей, снижение темпов синтеза - при
ингибирующей дозах ГМК (таблица).
Изучение интенсивности синтеза относительного содержания ДНК у растений,
подвергнутых различной концентрации и экспозиции воздействия ростового вещества на
растения, показали, что опытные растения, в основном, уступают контрольным растениям
по темпам накопления ДНК. Исключение составили лишь растения ржи, у которых, при
концентрации ГМК-0,001% через 48 часов после стрессового воздействия, отмечается
усиление синтеза ДНК, в сравнении с контрольными растениями.
157
Таблица
Изменение содержания РНК и ДНК в клетке проростков ржи и пшеницы при стимуляции и ингибировании ростовых
процессов, вызываемых действием гидрозид малеиновой кислоты
Варианты
РНК
пг
Фракции ДНК, пг
% лаб. от
общей ДНК
Лаб/
стаб
РНК/ ДНК
лабильная
стабильная остаточная
сумма
Рожь (после 24 ч)
Контроль (без обработки)
18,390
4,203
4,693
0,458
9,540
45
0.90
1,93
стимулирующая доза ГМК
17,752
4,018
2,984
0,713
7,715
52,1
1,35
2,30
ингибирующая доза ГМК
8,595
2,734
3,709
0,364
6,807
40.2
0,74
1.26
Пшеница (после 24 ч)
Контроль (без обработки)
31,340
2,058
6,658
1,384
10,100
20,5
0,31
3,10
стимулирующая доза ГМК
48,198
2,160
5,942
1,632
9,734
22,2
0,36
4,95
ингибирующая доза ГМК
25,382
1,903
5,778
1,181
8,862
21,5
0,33
2,86
Рожь (после 48 ч)
Контроль (без обработки)
13,498
2,788
3,653
0.425
6,866
40,6
0.76
1,97
стимулирующая доза ГМК
22,587
4,994
6,339
0,320
11,653
42,9
0,79
1,94
ингибирующая доза ГМК
8,627
1,380
2,326
0,302
4,008
34,4
0,59
2,15
Пшеница (после 48 ч)
Контроль (без обработки)
22,048
25,44
3,614
1,506
7,664
33,2
0,70
2,88
стимулирующая доза ГМК
22,616
2,104
1,495
0,465
4,064
51,8
1,40
5,57
ингибирующая доза ГМК
10,742
1,778
2,840
0,873
5,491
32,0
0,61
1,97
Dostları ilə paylaş: |